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HiScript II Q Select RT SuperMix for qPCR

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HiScript II Q Select RT SuperMix for qPCR

可灵活选择逆转录引物的两步法RT-qPCR 选用预混液
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HiScript II Q Select RT SuperMix for qPCR

可灵活选择逆转录引物的两步法RT-qPCR 选用预混液

第一链cDNA合成;逆转录;基因表达分析;两步法qRT-PCR检测

·  可靠的逆转录效率:高效的HiScript II Reverse Transcriptase具有较强的温度耐受能力,确保在高温条件下能打开RNA 复杂二级结构,得到更长的cDNA
·  可灵活选择逆转录引物:针对不同实验设计可灵活使用不同类型的逆转录引物
·  简便快捷的操作:即用型SuperMix 预混液使用方便省时

本产品以高性价比的HiScript II Reverse Transcriptase为基础,使用设计独特的Oligo(dT) 23  VN 引物,提高了反应特异性及灵敏度,获得质量更好的cDNA。针对不同实验设计可灵活使用不同类型的逆转录引物,满足多样化的实验需求,可根据逆转录后续实验需要选择Oligo (dT) 23  VN primer/Random Hexamers 或基因特异性引物(GSP)。同时对反应体系进行大幅简化,5 × qRT SuperMix 含有反转录反应除引物以外所需的全部试剂且在-20℃不会冻结,使用方便。

-30 ~ -15℃保存。

关键词:
R232
逆转录PCR
逆转录cDNA合成
RT-qPCR预混液
第一链cDNA合成
逆转录试剂
反转录试剂
RT-qPCR
RT-qPCR选用预混液
两步法RT-qPCR 选用预混液
即用型RT SuperMix
RT-PCR
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Q1:原核生物RNA能用我们的逆转录试剂吗?

A1:可以。原核生物RNA没有polyA尾,所以在逆转录反应体系中需要以Random primer作为逆转录引物。

 

Q2:延长逆转录时间,是否可以提高逆转录效率?

A2:对于大多数基因,延长逆转录时间对逆转录效率并没有显著提升;对于一些GC含量较高或含高级结构的模板,延长逆转录时间可提升逆转录效率。

 

Q3:如何评判RNA质量?

A3:RNA质量从两个方面反应:

(1) RNA完整度。通过琼脂糖凝胶电泳验证RNA完整度。以真核生物为例,完整的总RNA有清晰的三条带,分子量从大到小分别为28S、18S、5S,并且28S是18S亮度的两倍;若能看见三条带,但带型模糊或弥散,则说明RNA有部分降解,此时请立即进行逆转录反应,并适量加大模板量;若只能看见分子量很小的一条带或没有条带,则 RNA 已完全降解,需要重新提取。

(2) RNA的纯度。RNA的纯度可以通过OD260/280和OD260/230两个比值是否在1.8-2.1范围内进行判断,蛋白、离子等残留会使比值降低。

 

Q4:如何选择逆转录的引物?

A4:根据实验的具体情况选择随机引物、Oligo dT或基因特异性引物进行逆转录。

(1) 随机引物:随机结合在RNA的任何区域,适用于rRNA、mRNA、tRNA等所有RNA类型的逆转录反应。

(2) Oligo dT:适用于具有PolyA尾的RNA(原核生物RNA、真核生物的rRNA和tRNA不具有PolyA尾)。 由于Oligo dT结合在PolyA尾上,所以对 RNA 样品的质量要求较高,即使有少量的降解也会使全长cDNA合成量大大减少。

(3) 基因特异性引物:与模板序列互补,适用于序列已知的基因逆转录。

cDNA后续进行PCR扩增长片段,一般用Oligo dT或者基因特异性引物,不建议使用随机引物,因为随机引物是随机结合的,cDNA片段会偏短,可能会对长片段扩增造成稀释,后续扩增不出全长的目的基因;cDNA后续进行qPCR,一般使用Oligo dT和随机引物的混合物,可以避免3’端和5’端的扩增偏好性。

 

Q5:可以通过测逆转产物cDNA浓度判定逆转效率吗?

A5:不可以,逆转录产物cDNA是混合物,除了cDNA产物以外,还有buffer、逆转录酶、引物,同时还包含未转录的模板RNA,总RNA中的tRNA、rRNA等,都会干扰浓度测定结果,因此不能反应真实的cDNA产量。

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